

试剂盒组分  | 规格  | 储存条件  | |
48T  | 96T  | ||
诱导剂储备液  | 25mL  | 50mL  | 4℃  | 
提取液  | 50mL  | 100mL  | 4℃  | 
试剂一  | 5mL  | 10mL  | -20℃保存  | 
试剂二  | 粉剂×1瓶  | 粉剂×2瓶  | -20℃保存  | 
试剂三  | 3mL  | 6mL  | 4℃,避光保存  | 
试剂四  | 3mL  | 6mL  | 4℃,避光保存  | 
标准品(1M NaNO2)  | 1mL  | 1mL  | -20℃,避光保存  | 
自备耗材
酶标仪或可见光分光光度计(能测 540nm处的吸光值)及恒温培养箱
96孔板或微量玻璃比色皿、可调节式移液枪及枪头
去离子水
匀浆器(如果是组织样本)
试剂准备
诱导剂应用液的配制:使用时将诱导剂储备液稀释10倍,即按取1mL诱导剂储备液加9mL蒸馏水的比例,充分混匀。
提取液:即用型; 4℃保存。
试剂一:即用型;使用前平衡到室温;-20℃保存。
试剂二:临用前每瓶加 2mL提取液溶解,现配现用,溶解后的试剂,分装,-20℃保存。
试剂三:即用型;使用前平衡到室温;实验过程中避光放置;避光 4℃保存。
试剂四:即用型;使用前平衡到室温;实验过程中避光放置;避光 4℃保存。
标准曲线设置:取10µL NaNO2 标准品(1M)用 990µL 提取液稀释至10mM NaNO2。取10µL 10mM 的NaNO2 用 990µL 提取液稀释至100µM NaNO2。用100µM NaNO2按下表所示,进行下一步稀释:
100 µM NaNO2(μL)  | 提取液(μL)  | 浓度 (µM)  | |
Std.1  | 200  | 0  | 100  | 
Std.2  | 100  | 100  | 50  | 
Std.3  | 40  | 160  | 20  | 
Std.4  | 20  | 180  | 10  | 
Std.5  | 10  | 190  | 5  | 
Std.6  | 4  | 196  | 2  | 
Std.7  | 2  | 198  | 1  | 
注意:标准品现配现用;稀释后的标准溶液不稳定,必须在4小时内使用。
样本制备
植物组织样品的前处理:
(1)取适量诱导剂于烧杯中,将新鲜标本洗净,滤纸吸干,放入诱导剂应用液中(淹没即可),浸泡2h,取出样本,滤纸吸干。
(2)称取约0.1g组织,加入1mL预冷的提取液,冰浴匀浆。8000g 4℃离心10min,取上清,置冰上待测。
注意:
使用新鲜没有冷冻过的样本。一般不要诱导处理,预测定结果没有活性(A测定≤A对照)则需要诱导处理。
细菌或真菌的前处理:
先收集500万细菌或真菌到离心管内,用冷PBS清洗细胞,离心后弃上清,加入1mL预冷的提取液,冰浴超声波破碎细胞5min(功率20%或200W,超声3s,间隔7s,重复30次),然后;8000g 4℃离心10min,取上清,置冰上待测。
注意:样品处理等过程均需要在冰上进行,且须在当日测定酶活力,匀浆液避免反复冻融。
如需测定蛋白浓度,推荐使用BCA法蛋白质定量试剂盒,进行样本蛋白质浓度测定。
实验步骤
1. 酶标仪或可见光分光光度计预热30min以上,调节波长到540nm,可见光分光光度计去离子水调零。
2. 样本测定(在96孔板或微量玻璃比色皿中按照如下方式加样):
试剂  | 空白孔(μL)  | 标准孔(μL)  | 测定孔(μL)  | 对照孔(μL)  | 
样本  | 0  | 0  | 100  | 100  | 
不同浓度标准品  | 0  | 100  | 0  | 0  | 
去离子水  | 100  | 0  | 0  | 75  | 
试剂一  | 75  | 75  | 75  | 0  | 
试剂二  | 25  | 25  | 25  | 25  | 
混匀后,25℃反应10min  | ||||
试剂三  | 50  | 50  | 50  | 50  | 
试剂四  | 50  | 50  | 50  | 50  | 
1. 充分混匀,室温孵育20min,测定540nm处的吸光值A。计算ΔA测=A测定-A对照、ΔA标=A标准-A空白。空白管只需做1管。每个测定孔设一个对照孔。
注意:实验之前建议选择2-3个预期差异大的样本做预实验。如果样本测定没有活性(A测定≤A对照)则需要诱导处理,诱导处理后的样本对照孔中试剂二改成加25μL去离子水。如果样本吸光值大于1.2,样本可用提取液进一步稀释,计算结果乘以稀释倍数,或减少提取用样本量。
结果计算
1. 标准曲线的绘制
以标准溶液浓度为y轴,ΔA标为x轴,绘制标准曲线(浓度为y轴更方便计算结果)。将样本的ΔA测代入方程得到y值(1μM=1μmol/L=1nmol/mL)。
2. NR活性计算:
(1)按样本鲜重计算:
单位定义:每g鲜重样品在反应体系中每分钟催化产生1nmol NO2ˉ的量为一个NR活力单位。
NR(U/g 鲜重)=y×V反总÷(V样÷V样总×W)÷T=0.2y÷W
(2)按样本蛋白浓度计算:
单位定义:每mg组织蛋白在反应体系中每分钟催化产生 1nmol NO2ˉ的量为一个 NR活力单位。
NR(U/mg prot)=y×V反总÷(V样×Cpr)÷T=0.2y÷Cpr
(3)按细胞数量计算:
单位定义:每104个细胞在反应体系中每分钟催化产生 1nmol NO2ˉ的量为一个 NR活力单位。
NR(U/104 Cells)=y×V反总÷(V样÷V样总×500)÷T=0.0004y
V反总:反应体系总体积,200μL=0.2mL;V样:加入样本体积:0.1mL;V样总:加入提取液体积,1mL;T:反应时间,10min;Cpr:样本蛋白质浓度,mg/mL;W:样本鲜重,g;500:细胞数量,5×106。
结果展示
典型标准曲线-以下数据和曲线仅供参考,实验者需根据自己的实验建立标准曲线。


 
                                                       

1. 实验过程中请穿戴实验服、口罩和乳胶手套。请按照生物实验室的国家安全规定进行实验,尤其是在检测血样或其他体液时。
2. 本试剂盒仅用于实验室科学研究,如果本试剂盒用于临床诊断或任何其他用途,我们将不对任何后果负责。
3. 本试剂盒应在有效期内使用,并请严格按照说明书进行存储。
4. 不同批次号、不同厂家之间的组分不要混用;否则,可能导致结果异常。
5. 
勤换吸头,避免各组分之间的交叉污染。
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                                                        答:可能的原因有:
1、胶凝的不均匀或聚合不好,建议灌胶前将溶液充分混匀;
2、某些样品盐浓度较高,建议除盐或将样品盐浓度调成一致;
3、缓冲液陈旧,成分改变,可以重配;
4、凝胶下面有气泡,电泳前要先将气泡赶走;
5、电泳时温度过高,可以降低电流或电压;
6、样品中含有不溶性颗粒,建议样品充分搅拌混匀。
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